Comparación de seis métodos coproscópicos para el diagnóstico del cromista Blastocystis spp | Comparison of six coproscopics methods for the diagnosis of the chromista Blastocystis spp

Milagros Figueroa Lara, Leonor Mora, Hermelinda Silva

Resumen


Blastocystis spp. es uno de los parásitos intestinales zoonóticos de mayor prevalencia y distribución mundial. Está caracterizado por una gran variabilidad genética, lo que dificulta su estudio, generando controversias en cuanto a características morfológicas, ciclo vital, criterios diagnósticos y rol patógeno. Se evaluaron seis técnicas de laboratorio para la identificación de Blastocystis spp. en 391 muestras fecales de pacientes de ambos sexos y diferentes edades que asistieron al Laboratorio Clínico Universitario (LCU) y a los laboratorios de emergencia y general del Servicio Autónomo del Hospital Universitario Antonio Patricio de Alcalá (SAHUAPA), Cumaná, estado Sucre, Venezuela, durante mayo-junio de 2013. Se consideró el examen directo como estándar de oro para la detección del cromista, y como pruebas de comparación los métodos de concentración: sedimentación espontánea en tubo (SET) y Ritchie modificado, y las coloraciones: tinta china modificada, safranina-azul de metileno y May-Grünwald-Giemsa. Se obtuvo una prevalencia de parasitosis intestinal de 32,74% con el examen directo, con mayor frecuencia de Blastocystis spp. (17,39%). Al comparar los métodos de concentración y coloración, se pudo evidenciar que las técnicas que ofrecieron mejores porcentajes de sensibilidad fueron la tinción de May-Grünwald-Giemsa (94,12%), seguido de la tinta china modificada (92,65%); por último, la utilización de safranina-azul de metileno (76,47%), en cuanto a los porcentajes de especificidad superaron el (99,00%) con índices Kappa excelentes (> 0,75). Los métodos de concentración resultaron con porcentajes de sensibilidad relativamente bajos, mientras que la especificidad se mantuvo por encima de (99,00%), razón por la cual los métodos de tinción tinta china y May-Grünwald-Giemsa pueden ser incluidos como técnicas complementarias para la detección y estudio morfológico de Blastocystis spp.

 

Palabras clave: Blastocistosis, tinciones permanentes, métodos de concentración, morfología.

 

ABSTRACT

 

Blastocystis spp. is one of the zoonotic intestinal parasites with higher prevalence and global distrtibution. It is characterized by a great genetic variability, making it difficult to study, generating controversy in terms of morphological characteristics, life cycle, diagnostic criteria and its pathogenic role. We evaluated six laboratory techniques for the identification of Blastocystis spp. in 391 faeces specimens from patients of both sexes and different ages who attended the laboratories of University Hospital Antonio Patricio de Alcalá (SAHUAPA), Cumaná, Sucre, Venezuela, during May-June 2013. The direct examination was considered as a gold standard for the detection of the chromist and as comparison tests, the methods of concentration: spontaneous sedimentation in test tube and modified Ritchie, and the stains: modified chinesse ink, safranine-methylene blue and May-Grünwald-Giemsa. A prevalence of intestinal parasitosis of 32.74% was obtained with the direct examination, with a higher frequency of Blastocystis spp. (17.39%). Comparing the methods of concentration and coloration, better percentages of sensitivity were obtained with the staining May-Grünwald-Giemsa (94.12%), followed by Chinese ink (92.65%) and the use of safranine- methylene blue (76.47%). The percentages of specificity exceeded 99.0% with excellent Kappa indices (> 0.75). The methods of concentration resulted with relatively low percentages of sensitivity, while the specificity was maintained above 99.0%, reason why the methods Chinese ink staining and May-Grünwald-Giemsa can be included as complementary techniques for detection and morphological study of Blastocystis spp.

 

Key words: Blastocystosis, permanent stains, concentration methods, morphology.


Referencias


ACURERO E, CALCHI M, MERCHAN F, USECHE P. 2013. Prevalencia de Blastocystis sp. en preescolares y escolares del municipio Maracaibo, Venezuela. Rev. Soc. Ven. Microbiol. 33(2):146-150.

AL-TAWIL T, GILGERT M, GOPALAKRISHNA G, LANGSTON C, BOMMER K. 1994. Invasive Blastocystis hominis infection in a child. Arch. Pediatr. Adolesc. Med. 148(8):882-885.

AMATO NETO V, ALARCÓN R, GAKIYA E, FERREIRA S, BEZERRA R, SANTOS A. 2004. Elevada porcentagem de Blastocystose em escolares de São Paulo. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 37:354-356.

ASH L, ORIHEL T. 2010. Atlas de parasitología humana. 5a edición. Médica Panamericana. Buenos Aires, Argentina, pp. 103-105.

BARAHONA L, MAGUIÑA C, NAQUIRA C, TERASHIMA A, TELLO R. 2003. Blastocystosis humana: Estudio prospectivo, sintomatología y factores epidemiológicos asociados. Rev. Gastroenterol. Perú. 23(1):29-35.

BARRIOS E, CASTILLO S, GOITIA E, OJEDA O, ARAQUE W, DELGADO V. 2013. Mantenimiento y transporte de Blastocystis sp. en condiciones de vitalidad. Salus. 17(1):29-38.

BAUER J, ACKERMANN P, POKLIS A, STEIN E, GRAY R, TTILTON R, HOHNADEL D, TSAI C, HUTCHINSON M, KAPLAN L, MCHAUGHLIN K. 1986. Análisis clínico métodos e interpretación. Editorial Reverté, Madrid, España, pp. 140.

BERGAMO T, CARVALHO M. 2013. Morphological diagnostic and occurrence of Blastocystis sp. obtained from the stool samples of domestic bird commercialized in municipal market. J. Parasitol. Vector Biol. 5(3):20-26.

BERNARD R, HERNÁNDEZ G, RAMÍREZ E, GÓMEZ A, MARTÍNEZ L. 2001. Protozoos emergentes. Comparación de tres métodos de identificación. Rev. Mex. Patol. Clín. 45(4):193-199.

BOTERO D, RESTREPO M. 1998. Parasitología humana. Tercera edición. Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín, Colombia, pp. 18.

CÁRDENAS M, MARTÍNEZ R. 2004. Protozoarios parásitos de importancia en salud publica transportados por Musca domestica Linnaeus en Lima, Perú. Rev. Per. Biol. 11(2):149-153.

CARVALHO-COSTA F, QUEIROGA A, LARANJEIRA S, PONTES C, GAGLIARDI P, NEVES BÓIA M. 2007. Detection of Cryptosporidium spp. and other intestinal parasites in children with acute diarrhea and severe dehydration in Rio de Janeiro. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 40(3):346-348.

CAZORLA-PERFETTI D. 2014. ¿Blastocystis sp. o B. hominis? ¿Protozoario o chromista? Saber. 26(3):342-346.

CHOURIO-LOZANO G, DÍAZ G, CASAS M, TORRES L, CORZO G. 2009. Epidemiología y patogenicidad de Blastocystis hominis. Kasmera. 27(2):1-19.

CIOMS (CONSEJO DE ORGANIZACIONES INTERNACIONALES DE LAS CIENCIAS MÉDICAS). 1993. Pautas éticas internacionales para la conservación y experimentación biomédica en seres humanos. Ginebra, pp. 114.

DEVERA R, BLANCO Y, REQUENA I, VELÁSQUEZ V. 2006. Diagnóstico de Blastocystis hominis: bajo rendimiento de los métodos de concentración de formol-éter y sedimentación espontánea. Rev. Biomed. 17(3):231-233.

DEVERA R, APONTE M, BELANDRIA M, BLANCO Y, REQUENA I. 2008. Uso del método de sedimentación espontánea el diagnóstico de parásitos intestinales. Saber. 20(2):163-171.

DEVERA R, BLANCO Y, AMAYA I. 2015. Prevalencia de parásitos intestinales en escolares de Ciudad Bolívar, Venezuela: comparación de dos períodos. Kasmera. 43(2):122-129.

EYMAEL D, SCHUH G, GIACOMELLI R. 2010. Padronização do diagnóstico de Blastocystis hominis por diferentes técnicas de coloração. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 43(3):309-312.

GONZÁLEZ B, MICHELLI E, GUILARTE D, RODULFO H, MORA L, GÓMEZ T. 2014. Estudio comparativo de parasitosis intestinales en poblaciones rurales y urbanas del estado Sucre, Venezuela. Rev. Soc. Ven. Microbiol. 34(2):98-103.

GORDIS L. 2004. Epidemiology. 5th edition. Elsevier Saunders, Philadelphia, USA, pp. 177-303.

GUZMÁN C, ARRECHEDERA H, PÉREZ E. 2007. Ultraestructura de Blastocystis hominis y su enquistamiento en cultivo polixénico. Vitae. Academia Biomédica Digital. Disponible en línea en: http://vitae.ucv.ve/?module=articulo & rv=15- & n=382. (Acceso 15.06.2016).

HERNÁNDEZ A, BARRIOS E, SÁNCHEZ L, ARAQUE W, DELGADO V. 2012. Tipos morfológicos, números de parásitos por campo y carga parasitaria de Blastocystis sp. provenientes de pacientes sintomáticos y asintomáticos. Salus. 16(3):15-20.

KHALIFA A. 1999. Diagnosis of Blastocystis hominis by different staining techniques. J. Egypt. Soc. Parasitol. 29(1):157-165.

KOZUBSKY L, ARCHELLI S. 2010. Algunas consideraciones a cerca de Blastocystis sp., un parásito controversial. Acta Bioquim. Clin. Latinoam. 44(3):371-376.

MARTÍNEZ I, GUTIÉRREZ M, RUIZ L, RUIZ A, GUTIÉRREZ E, GAONA E. 2010. Blastocystis hominis y su relación con el estado nutricional de escolares en una comunidad de la Sierra de Huayacocotla, Veracruz, México. Rev. Biomed. 21(2):77-84.

MICHELLI E, DE DONATO M. 2001. Prevalencia de Blastocystis hominis en habitantes de Río Caribe, estado Sucre, Venezuela. Saber. 13(2):105-12.

MORA L, SEGURA M, MARTÍNEZ I, FIGUERA L, SALAZAR S, FERMÍN I, GONZÁLEZ B. 2009. Parasitosis intestinales y factores higiénicos sanitarios asociados en individuos de localidades rurales del estado Sucre. Kasmera. 37(2):148-156.

NASCIMENTO S, MOINTINHO M. 2005. Blastocystis hominis and other intestinal parasites in a comunity of Pitanga city, Paraná state, Brazil. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 47(4):213-217.

PAJUELO G, LUJÁN D, PAREDES B, TELLO R. 2006. Aplicación de la técnica de sedimentación espontánea en tubo en el diagnóstico de parásitos intestinales. Rev. Mex. Patol. Clin. 53(2):114-118.

PANUNZIO A, FUENTES B, VILLARROEL F, PIRELA E, AVILA A, MORELO-ZAMBRANO T, NUÑEZ M, PARRA-CEPEDA I. 2014. Prevalencia y epidemiología de Blastocystis sp. en dos comunidades del municipio Maracaibo-estado Zulia. Kasmera. 42(1):9-21.

RUGGIERO M, GORDON D, ORRELL T, BAILLY N, BOURGOIN T, BRUSCA R, CAVALIER-SMITH T, GUIRY M, KIRK P. 2015. A higher level classification of all living organisms. PLoS ONE. 10(4):1-60.

SALINAS J, VILDOZOLA H. 2007. Infection by Blastocystis: a review. Rev. Gastroenterol. Perú. 27(3):264-274.

SÁNCHEZ L, BARRIOS E, SARDIÑA A, ARAQUE W, DELGADO V. 2012. Infección experimental de aislados humanos de Blastocystis sp. en ratones inmunosuprimidos con dexamentasona. Kasmera. 40(1):67-77.

SHEEHAN D, RAUCHE, B, MCKITRICK J. 1986.Association of Blastocystis hominis.With singns and symptoms of human disease. J. Clin. Microbiol. 24(4):548-550.

TAN K. 2008. New insights on classification, identification and clinical relevance of Blastocystis spp. Clin. Microbiol. Rev. 21(4):639-665.

TAN K, SINGH M, YAP E. 2002. Recent advance in Blastocystis hominis research: hot spot in terra incognita. Int. J. Parasitol. 32(7):789-804.

VELÁSQUEZ V, CALDERA R, WONG W, CERMEÑO G, FUENTES M, BLANCO Y, APONTE M, DEVERA R. 2005. Elevada prevalência de blastocistose em pacientes do Centro de Saúde de Soledad, estado Anzoátegui, Venezuela. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 38(4):356-357.

WAYNE D. 1999. Biostatistics: a foundation for analysis in the health sciences. John Wiley y Sons, INC., Toronto, Canadá, pp. 52-56.

ZAPATA J, ROJAS C. 2012. Una actualización sobre Blastocystis sp. Rev. Gastrohnup. 14(3):94-100.

ZERPA R, HUICHO L. 1999. Tinta china modificada para la detección de formas encapsuladas de Blastocystis hominis. Rev. Mex. Patol. Clín. 46(3):184-186.

ZIERDT C. 1991. Blastocystis hominis past and future. Clin. Microbiol. Rev. 4(1):61-79.


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